Wie funktioniert Western Blot?

Der Western Blot ist eine biochemische Methode, die verwendet wird, um spezifische Proteine in einer Probe nachzuweisen und zu quantifizieren. Hier sind die grundlegenden Schritte, wie der Western Blot funktioniert:

1. **Probenvorbereitung**: Zunächst wird die Probe (z.B. Zelllysate) aufbereitet, um die Proteine zu extrahieren. Diese Proteine werden dann in einem Puffer gelöst.

2. **Gel-Elektrophorese**: Die aufbereiteten Proteine werden durch Gel-Elektrophorese getrennt. Dabei wandern die Proteine durch ein Polyacrylamidgel, wobei kleinere Proteine schneller wandern als größere. Dies ermöglicht die Trennung der Proteine nach ihrer Größe.

3. **Transfer**: Nach der Elektrophorese werden die Proteine vom Gel auf eine Membran (häufig Nitrocellulose oder PVDF) übertragen. Dies geschieht in der Regel durch einen elektrischen Strom, der die Proteine auf die Membran zieht.

4. **Blockierung**: Um unspezifische Bindungen zu verhindern, wird die Membran mit einer Blockierungslösung behandelt, die ungebundene Stellen auf der Membran besetzt.

5. **Antikörperinkubation**: Die Membran wird dann mit einem spezifischen primären Antikörper inkubiert, der an das Zielprotein bindet. Nach einer Inkubationszeit wird die Membran gewaschen, um ungebundene Antikörper zu entfernen.

6. **Sekundärantikörper**: Ein sekundärer Antikörper, der an den primären Antikörper bindet und oft mit einem Enzym oder Fluoreszenzfarbstoff konjugiert ist, wird hinzugefügt. Dieser Antikörper ermöglicht die Detektion des Zielproteins.

7. **Detektion**: Schließlich wird ein Substrat hinzugefügt, das mit dem Enzym des sekundären Antikörpers reagiert, um ein messbares Signal zu erzeugen (z.B. chemilumineszente oder färbende Reaktionen). Dieses Signal kann dann mit verschiedenen Methoden quantifiziert werden.

Der Western Blot ist ein wichtiges Werkzeug in der Molekularbiologie und Biochemie, um die Expression und das Vorhandensein von Proteinen zu untersuchen.